颠覆性方法!OFM微灌流 PBPK建模,精准预测单抗皮下生物利用度

    Part 01

导读

在生物制剂研发领域,单克隆抗体(mAbs)药物的皮下注射剂型因其方便患者自行给药而备受青睐。然而,如何准确预测其进入人体后的生物利用度,一直是困扰业界的难题。传统的临床前动物模型往往因种属差异导致预测不准,从而增加后期临床研发失败的风险。

开放式微灌流技术作为一项能够原位、连续监测组织内药物浓度的创新工具,正在改变这一现状。一项最新发表于《Journal of Controlled Release》的研究,巧妙地将OFM技术与计算机建模结合,为精准预测单抗的人体皮下生物利用度开辟了一条全新路径。



    Part 02

研究背景:破解单抗吸收的“黑箱”

皮下注射后,药物需要从注射部位穿越复杂的细胞外基质,最终进入淋巴或血液循环。这一过程受到扩散、非特异性结合、组织降解等多种因素影响,如同一只“黑箱”。传统方法难以在活体条件下直接量化这些局部组织相互作用,导致计算机模型的预测缺乏关键数据支撑。


本研究旨在结合OFM技术在猪模型中获取高分辨率的局部药代动力学数据,并将其整合到生理药代动力学模型中,以期更准确地预测三种不同单抗(阿利西尤单抗、布罗达单抗、苏金单抗)的人体生物利用度。


表1. 本研究中测试的单抗药物

药物(商品名)

公司

浓度

苏金单抗(Cosentyx®)

Novartis

150 mg/mL

阿利西尤单抗(Praluent®)

Sanofi

150 mg/mL

布罗达单抗(Kyntheum®)

LEO

140 mg/mL

    Part 03

创新方法:OFM技术如何“撬开”黑箱?


本研究的核心亮点在于对OFM技术的创新性应用,巧妙地将原本用于采样的探针,转变为精准给药的“工具”。

图片1.png

图1. 实验流程示意图。

OFM探针首先用于缓慢灌注单抗(灌注期),随后用于连续采集含有药物的间质液(采样期)。实验结束时,在距探针不同距离处采集组织活检样本。

在每头猪的背部,研究人员间隔至少2cm设置了15个应用位点,在每个位点的皮下脂肪组织中植入一枚线性OFM探针。三种单抗各在每头猪的5个独立位点进行测试。

实验分为三个阶段:


灌注期(0-1h):封闭探针末端,在1小时内缓慢注入60μL单抗药液,刻意避免了传统注射方式形成的大型“药物储库”,从而排除了储库效应对吸收过程的干扰。


再灌注期(1-2h):打开探针末端,再次灌注60μL药液,确保药物充分分布于探针周围的微环境中。


采样期(2-10h):切换至标准灌流液(含1% BSA的ELO-MEL®),以1μL/min的流速通过同一探针连续采集间质液样本,每小时收集一次,获得药物从局部组织“洗脱”的精细浓度曲线。




实验结束时,在OFM探针周围0-2mm(B1)、2-4mm(B2)、4-6mm(B3)、6-8mm(B4)处分别取组织活检,通过分析这些样本中的药物含量,量化药物在组织中的空间分布和滞留情况。


     Part 04

关键发现:从数据到模型的桥梁

通过上述方法,研究团队成功获得了两个关键的生物相关性参数,并将其输入PBPK模型:



扩散速率常数(kOFM)

从OFM采样的浓度-时间曲线(图2)中计算得出。它量化了药物从注射部位通过间质液向淋巴系统扩散的速率。




组织结合/降解速率常数(kLocal)

结合活检数据与OFM数据计算得出(表3)。它反映了药物在局部组织中因非特异性结合或降解而“损失”的部分。

单抗与猪皮下脂肪组织的相互作用(OFM采样)


图片2.png

图2. 间质液中单抗浓度-时间曲线。 数据以中位数表示,误差棒表示四分位距(n=10个OFM探针/单抗)。

再灌注期结束后,首个ISF样本(t=3h)中的单抗浓度约为20,000-25,000 pg/mL,反映了药物从OFM采样系统、探针周围皮下脂肪组织及纤维间隔中的清除过程。这种缓慢、低容量的灌注方式成功避免了传统注射形成的大型药物储库。到t=4h时,药物浓度显著下降约10倍至2500-3000 pg/mL,表明饱和间质空间中的药物主要通过对流被快速清除。从t=4-10h,ISF样本呈现典型的回扩散洗脱曲线,药物顺浓度梯度从皮下脂肪组织向OFM采样系统分布。

基于这些浓度-时间曲线,研究人员假设其为一级分布过程,并通过计算log(浓度)-时间曲线的斜率,得到了扩散速率常数(kOFM)。

单抗与猪皮下脂肪组织的相互作用(组织活检)


表2. 不同距离活检组织中的单抗浓度(单位:µg/mg组织)

活检位置

阿利西尤单抗

布罗达单抗

苏金单抗

B1 (0-2mm)

2.5

0.5

0.5

B2 (2-4mm)

3.0

0.8

0.8

B3 (4-6mm)

1.5

0.2

0.2

B4 (6-8mm)

1.0

0.1

0.1


图片3.png

图3. 各距离活检组织中的单抗浓度。 B1(0-2mm)、B2(2-4mm)、B3(4-6mm)、B4(6-8mm)。


从以上数据可以观察到:

浓度梯度分布:对于所有三种单抗,药物浓度均呈现从注射中心向外逐渐递减的规律。B2位置(2-4mm)的浓度略高于B1,可能是由于OFM探针持续采样对最近端组织产生了“洗出”效应。


描述单抗皮下处置的速率常数计算


基于OFM和活检数据,研究人员计算了描述单抗在皮下组织中处置的一级速率常数:

表3. 基于OFM和活检数据计算的速率常数

参数

阿利西尤单抗

布罗达单抗

苏金单抗

扩散速率常数 kOFM (h⁻¹)

0.239

0.332

0.311

组织结合/降解常数 kLocal (h⁻¹)

0.069

0.240

0.082

局部组织滞留比例 (%)

22.4%

42.0%

20.8%

局部组织滞留比例的计算方法:通过估算每个活检位置周围的组织体积(考虑组织密度0.91 mg/mm³),计算各位置的组织总量和药物总量,加和得到局部组织中滞留的药物总量,再与实际给药的药物总量(约9.45 mg)对比得出。


数据显示,布罗达单抗在局部组织中的滞留比例最高(42%),其组织结合/降解常数也最高,这与后续临床生物利用度最低的特征相吻合。


预测力提升:模型验证的巨大成功当将这些源自猪体内OFM实验的参数整合到人体PBPK模型后,模拟出的单抗全身浓度-时间曲线与临床实际观测数据高度吻合。


图片4.png

图4. 人体药时曲线预测对比。 OFM-informed模型(实线)预测的浓度曲线,较传统模型(虚线)更贴近临床观测数据点(散点)。从左至右依次为:阿利西尤单抗、布罗达单抗、苏金单抗。

预测精度显著提高:与未使用OFM数据的传统模型相比,新模型对三个单抗的药时曲线下面积的预测精度均得到明显改善:

表4. 模型预测性能对比

指标

模型

阿利西尤单抗

布罗达单抗

苏金单抗

AAFE(准确度)

传统模型

1.90

2.96

1.63


OFM-informed模型

1.43

1.83

1.15

AFE(偏差)

传统模型

0.90

2.94

0.80


OFM-informed模型

0.86

0.75

0.89

(注:AAFE=绝对平均折叠误差,越接近1越准确;AFE=平均折叠误差,越接近1偏差越小)


生物利用度预测精准:模型预测的三种单抗绝对生物利用度,与临床文献报道值的偏差均在±5%以内,预测准确性极高。


表5. 生物利用度预测值与临床值对比

单抗

临床生物利用度(源自药品说明书)

模型预测值

阿利西尤单抗

81%

76%

布罗达单抗

55%

52%

苏金单抗

73%

78%




    Part 05

更深的洞见:组织滞留与生物利用度的关联


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图5. 活检组织中的单抗浓度与临床生物利用度的关系

上图清晰地展示了一个关键趋势:三种测试单抗在最近端活检组织(距探针0-2mm)中的浓度中位数,与其已知的临床生物利用度呈现明显的负相关关系。

布罗达单抗:组织浓度最高,其临床生物利用度最低(55%)


阿利西尤单抗:组织浓度中等,临床生物利用度最高(81%)


苏金单抗:组织浓度最低,临床生物利用度居中(73%)


原文作者指出:“较高的组织浓度对应着较低的临床生物利用度”。这为理解单抗生物利用度的差异提供了直接的组织水平证据:如果在注射部位周围组织中检测到的药物浓度越高,说明有更大比例的药物因为非特异性结合、沉淀或被组织中的酶降解等原因而“滞留”在局部,无法进入淋巴或血液循环发挥作用。


研究团队进一步推测:“我们假设,较长的间质滞留时间会使单抗暴露于降解过程中,包括酶解和免疫细胞相互作用”。这意味着,那些与组织结合力强的单抗,在局部停留时间更长,面临更高的降解风险,从而导致进入全身循环的药量减少,生物利用度降低。

这一发现与研究中通过OFM采样计算出的组织结合/降解速率常数高度一致:布罗达单抗具有最高的组织结合/降解常数(kLocal=0.240 h⁻¹)和最高的组织滞留浓度,而其生物利用度最低。这充分说明:局部组织相互作用——而非简单的扩散差异——是决定单抗最终生物利用度的关键因素之一。



    Part 06

结论与展望:开启单抗研发的“精准预测”时代

本研究通过 “OFM活体实验 + PBPK建模” 的整合策略,首次实现了在考虑局部组织复杂相互作用的前提下,精准预测单抗的人体皮下生物利用度。与常规注射方法不同,本研究利用OFM探针在1小时内缓慢灌注小体积单抗药液,最大限度地减少了对组织的机械性干扰,避免了皮下注射部位大型药物储库的形成。用于单抗灌注的同一组OFM探针,随后被巧妙地“改造”为人工淋巴管,在8小时内持续采集含有药物的间质液样本。


ISF样本呈现初期高浓度随后典型洗脱动力学的特征,使得估算单抗在皮下空间的扩散速率常数成为可能。与基于PBPK模型的生物利用度预测结果一致,OFM探针周围的组织活检样本显示,局部单抗浓度与临床生物利用度呈负相关,提示增强的组织相互作用可能降低生物利用度。


这种方法不仅显著提升了预测准确性,为临床剂量选择提供了更可靠的依据,还能深入揭示不同单抗在组织微环境中的行为差异。

这一成果的意义在于:传统上,由于种属差异,直接用动物模型的全身数据预测人体生物利用度往往不够准确。而本研究巧妙地避开了这一局限,不是用“猪的全身数据”预测“人的全身数据”,而是用“猪的局部组织相互作用数据”去校准“人的吸收模型”。 这种策略首次实现了在考虑局部组织复杂相互作用的前提下,利用临床前动物实验数据精准预测单抗的人体皮下生物利用度,为生物制剂的研发提供了全新的思路和可靠的工具。

OFM微灌流

OFM技术的核心优势在此研究中体现得淋漓尽致:


无膜开放交换:直接采集间质液,真实反映组织内药物浓度,适用于小分子/大分子药物、亲水/亲脂性物质、多肽、蛋白、抗体等。



高分辨率动态数据:连续采样提供精细的药代动力学曲线,可计算关键速率常数。



功能多样性:同一探针既可给药,又可采样,最大限度减少对组织的干扰。



结合形态学分析:与组织活检技术联用,实现药代动力学与组织分布的空间关联。


未来研究应扩大单抗 panel,特别是纳入临床生物利用度低的候选单抗,以验证这些发现并扩展其适用性。这种结合实验与计算的综合方法,为预测单抗生物利用度提供了一个有前景的平台。

FDA推荐BE测试方法——OFM开放式微灌流

1、微创、连续、活体取样

2、探针无膜,开放式交换

3、适用于小分子/大分子药物,亲水/亲脂性物质,多肽,蛋白,抗体,结合药物与游离药物,转运体,酶,纳米载体和囊泡等的活体取样。



  参考文献  


Schwagerle, G.; Bonan, R.H.; Milewski, M.; et al. Predicting human subcutaneous bioavailability of monoclonal antibodies using an open flow microperfusion porcine model. Journal of Controlled Release 2025, 389, 114401. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2025.114401

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